Mycoplasma hominis voi aiheuttaa pehmytkudosinfektion

Samankaltaiset tiedostot
PD-hoidon komplikaatiot

Bakteeriviljelystä löytyi sieni mitä tehdään?

Moniresistenttien mikrobien näytteenotto

Laatunäkökulma tuberkuloosin immunodiagnostiikassa

TaLO-tapaukset Virusoppi. Vastuuhenkilöt: Tapaus 1: Matti Varis Tapaus 2: Veijo Hukkanen Tapaus 3: Sisko Tauriainen Tapaus 4: Ilkka Julkunen

IAP:n lasiseminaari Tapaus 9. Paula Kujala, PSHP

C. difficile-diagnostiikan vaikutus epidemiologiaan, potilaan hoitoon ja eristyskäytäntöihin. Miksi lasten C. difficileä ei hoideta? 16.3.

Mycoplasma bovis hiljainen ja tappava? Tarja Pohjanvirta, Eläintautibakteriologia, Kuopio

Lasten virtsatieinfektioiden diagnostiikan ja hoidon kulmakivet

Pihkauutteen mikrobiologiaa

ITÄ-SUOMEN LABORATORIOKESKUKSEN ISLAB Laboratoriotiedote 17/2008 LIIKELAITOSKUNTAYHTYMÄ. Kliininen mikrobiologia (5)

ASPIRAATIOPNEUMONIA. LL, evl, Teemu Keskiväli

Tietopaketti seksitaudeista

Miten tunnistan vakavan infektion päivystyksessä? Johanna Kaartinen HYKS Päivystys ja valvonta

Tekonivelinfektiot Teija Puhto Infektiolääkäri Infektioiden torjuntayksikkö, OYS

Vanhusten virtsatieinfektio. TPA Tampere: Vanhuksen virtsatieinfektio

VERISUONIKATETRI-INFEKTIOT

Kliinikon odotukset virtsatieinfektioiden laboratoriotutkimuksilta

Pihkauutteen mikrobiologiaa. Perusselvitys pihkajalosteen antimikrobisista ominaisuuksista

MIKROBILÄÄKERESISTENSSITILANNE 2014

Läpimurto ms-taudin hoidossa?

4.3 HOITOON LIITTYVIEN INFEKTIOIDEN SEURANTA

Laboratorion merkitys infektioiden diagnostiikassa. Risto Vuento Laboratoriokeskus PSHP

Moniresistentit bakteerit

VERTAILULABORATORIOTOIMINTA

Tekonivelinfektion antibioottihoito. Teija Puhto LT, sis. ja inf. el vs.oyl, Infektioiden torjuntayksikkö OYS

Alueellinen sairaalahygieniapäivä Epidemiologinen katsaus

Labquality Ulkoinen laadunarviointikierros

HYGIENIAHOITAJAN ROOLI TOIMENPITEISIIN LIITTYVIEN INFEKTIOIDEN SELVITYKSESSÄ JAANA VATANEN HYGIENIAHOITAJA, HYKS PEIJAS

B-leuk-määritys vieritestimittauksena infektiodiagnostiikassa

Labquality Ulkoinen laadunarviointikierros Bakteeriviljely 2/2012

Mikrobilääkeresistenssitilastot

Labquality Ulkoinen laadunarviointikierros Bakteeriviljely1 1/2011. Kuvat ja teksti: Markku Koskela, ylilääkäri OYS, mikrobiologian laboratorio Oulu

Hengitystieinfektiot urheilijoilla. Matti Karppelin

Labquality Kudos- ja märkänäytteiden bakteeriviljely

Uutta lääkkeistä: Ulipristaali

Bakteeriviljelynäyte kroonisesta haavasta

Jukka Hytönen Kliinisen mikrobiologian erikoislääkäri UTULab Bakteeriserologia

Labquality Ulkoinen laadunarviointikierros Bakteeriviljely 1 3/2012

TEKONIVELLEIKKAUS COXASSA. Marita Mikkola Minna Nyrhi

Kierrospalautteita: Veriviljelyt. Jari Hirvonen Sairaalamikrobiologi, FL Fimlab Laboratoriot Oy

Antibioottiresistenssitilanne Varsinais-Suomessa 2013

INFEKTIOIDEN SEURANTA- MÄÄRITELMÄT PITKÄAIKAIS- HOITOLAITOKSISSA

Clostridium difficile diagnostiikan nykyvaihe ja pulmat. Janne Aittoniemi, LT, dos, oyl Fimlab Laboratoriot Oy

Gram-värjäykset. Olli Meurman

Mitä uutta sepsiksen biomarkkereista? Reetta Huttunen LT, infektiolääkäri, apulaisylilääkäri, TAYS Infektioyksikkö

Labquality Ulkoinen laadunarviointikierros Bakteeriviljely 1 1/2013

PALAUTE BAKTERIOLOGIAN LAADUNARVIOINTIKIERROKSILTA. Markku Koskela OYS/Mikrobiologian laboratorio (OML)

VANHUKSEN KUOLEMANSYYN SELVITTÄMINEN TERVEYSKESKUKSESSA. Hanasaari Pekka Harve, yleislääketieteen el. Inari Ei sidonnaisuuksia

Kliinisesti merkittävien bakteerien jaottelua

Pneumonia Maija Halme

Proteesikomplikaatoiden SPECT- ja PET/CT. Jukka Kemppainen

Miten tulkitsen mikrobiologisia laboratoriovastauksia?

4.1 SAIRAALAINFEKTIOLUOKAT

Vaik aik infek infe t k io resistentti resistentti bakteeri bakteeri!! ANAMNEESI!! + s + tatus!

Infektio vai kolonisaatio?

SAV? Milloin CT riittää?

Labquality Ulkoinen laadunarviointikierros Bakteeriviljely 1 2/2011

Virtsatieinfektiot. ivä Infektioyhdyshenkilöiden iden koulutuspäiv. Teija Puhto Infektiolää

Labquality Ulkoinen laadunarviointikierros Bakteeriviljely 1 4/2010

Materiaalinäytteiden qpcr-tulosten tulkinnasta

Hoitoon liittyvät infektiot: SIRO-seuranta Osa 3

Antibioottiresistenssitilanne Varsinais-Suomessa 2017

Tuomas Nieminen Sisätautien ja infektiosairauksien el, Oyl SataDiag/SatSHP

Laadukas kl mikrobiologian laboratoriovastaus

Moniresistenttien bakteereiden aiheuttamat infektiot sairaalassa

Antibioottiresistenssitilanne Varsinais-Suomessa 2018

1. ELÄINLÄÄKKEEN NIMI. Amoxibactin vet 250 mg tabletit koirille 2. LAADULLINEN JA MÄÄRÄLLINEN KOOSTUMUS

Käsihygienia. Levitänkö mikrobeja, tartutanko tauteja? Katariina Kainulainen. Dos, sisätautien ja infektiosairauksien erikoislääkäri

Labquality Ulkoinen laadunarviointikierros Bakteeriviljely 1 2/2015

1.Kirurginen antimikrobiprofylaksi Lapin keskussairaalassa

MRSA-kantajuuden seuranta

Kokogenomisekvensointi (WGS)

Bioanalyytikko- ja lähihoitaja opiskelijoiden harjoittelupaikat Islabissa

onko panostettava tartunnan torjuntaan vai lisäksi infektiontorjuntaan? Mari Kanerva SIRO-päivä

HIV ja hepatiitit HIV

VERTAILULABORATORIOTOIMINTA Evira 3484/liite 2/versio 8

Varhaisvaiheen puhdistusleikkauksen tulokset lonkan ja polven tekonivelinfektion hoidossa - retrospektiivinen seurantatutkimus

Immuunipuutokset. Olli Vainio OY Diagnostiikan laitos OYS Kliinisen mikrobiologian laboratorio

Valtakunnallinen suositus moniresistenttien mikrobien torjunnasta. Elina Kolho

HOITOON LIITTYVÄT INFEKTIOT AKUUTTISAIRAANHOIDON ULKOPUOLELLA. Emmi Sarvikivi. THL Infektiotautien torjunta ja rokotukset

evira-3484-liite-2-sir-tulkintarajat.xlsx kiekossa S I R AMINOGLYKOSIDIT Enterobacteriacae, Pseudomonas aeruginosa 10 mg

Koulutussairaalat ja kouluttajat:

VARSINAIS-SUOMEN SAIRAANHOITOPIIRI FINLANDS SJUKVÅRDSDISTRIKT

Koagulaasipositiivisten stafylokokkien määrittäminen. Pesäkelaskentatekniikka.

Tuberkuloosin diagnostiikka

VIERITESTI VAI SPESIFIT VASTA-AINEET Jukka Suni

Päivitetty Antibioottiopas. Empiirisen mikrobilääkkeen valinta sairaalapotilaalle

Emättimen luontaisen bakteerikannan tasapainottamiseen ja ylläpitoon.

Osteoporoosin diagnostiikka. Ari Rosenvall Yleislääketieteen erikoislääkäri Mehiläinen Ympyrätalo, osteoporoosiklinikka

ITÄ-SUOMEN LABORATORIOKESKUKSEN Tiedote KU 2/2010 1(5) LIIKELAITOSKUNTAYHTYMÄ Kuopion aluelaboratorio Kliininen mikrobiologia

UHKAAKO ANTIBIOOTTIEN TEHOTTOMUUS (ANTIBIOOTTIRESISTENSSI)? ANTTI NISSINEN FT, KLIINISEN MIKROBIOLOGIAN DOSENTTI

Akuutti maha- Syynä gynekologinen infektio

Original Elche antimicrobi TM desinfiointiaineen testaus Legionella lajeille

Proscar , versio 3.0 RISKIENHALLINTASUUNNITELMAN JULKINEN YHTEENVETO

Ajankohtaista laboratorionäytteistä

Moniresistentit mikrobit MRSA, ESBL, CPE ja VRE. Alueellinen koulutus Mikrobiologi Terhi Tuhkalainen

Miten MALDI-TOF MS -menetelmä on muuttanut diagnostiikkaa ja tunnistusta?

Transkriptio:

Sakari Vuorinen ja Tamara Tuuminen TAPAUSSELOSTUS Mycoplasma hominis voi aiheuttaa pehmytkudosinfektion Mycoplasma hominis ja Ureaplasma urealyticum ovat virtsateiden ja sukupuolielinten limakalvojen normaalia mikrobistoa. Mikrobien osuus vaikeiden pehmytkudosinfektioiden aiheuttajina näyttää julkaistun tiedon valossa vähäiseltä, mutta toisaalta ne ovat myös vakiintuneen diagnostiikan ja mikrobilääkevalintojen kirjon ulkopuolella. Esittelemme kaksi potilastapausta, joissa Mycoplasma hominis -bakteeria kasvoi märkänäytteestä. Näitä bakteereja tulee osata epäillä ja tutkia, mikäli kliininen kuva tai hoitovaste on poikkeava. Mykoplasmat kuuluvat pienimpiin eläin- tai kasvisoluista riippumattomiin mikro-organismeihin. Ne ovat kooltaan samaa luokkaa (150 240 nm) kuin suuret virukset. Mykoplasmat luokitellaan kuitenkin bakteereiksi, sillä niiden kasvatus ei vaadi soluja. Toisin kuin viruksilla, mykoplasmaperimä sisältää sekä RNA:ta että DNA:ta (Mandell ym. 1995). Mykoplasmat tunnistettiin imeväisten patogeeneiksi jo vuonna 1898. Mykoplasmoista Mycoplasma pneumoniaeta (ent. Pleuropneumonia-like agent) on tutkittu eniten, muista mykoplasmoista on julkaistu enimmäkseen satunnaisia tapausselostuksia. Laji Mycoplasma hominis kuuluu Mycoplasma-sukuun, Mycoplasmataceae-heimoon ja Mollicutes-luokkaan, jonka voinee suomentaa pehmeänahkaisiksi. Mykoplasmat ovat pieniä pleomorfisia bakteereita, joilta puuttuu ulkorakennetta vahvistava peptidoglykaanikerros. Solulimaa ympäröi vain sterolikalvo, ja solukalvo on hyvin muovautuva. Tästä syntyi nimi kreikankielisistä sanoista: mykes = sieni, plasma = muotoiltava. Koska peptidoglykaani puuttuu, mykoplasmat ovat beetalaktaameille resistenttejä. Ne ovat isäntäspesifisiä. Mycoplasma-suvun diagnostiikka on Suomessa M. pneumoniaeta lukuun ottamatta vakiintumatonta. M. hominiksen aiheuttamat kliiniset infektiot voivat jäädä toteamatta, koska tavanomaiset viljelymenetelmät eivät sovellu niiden osoittamiseen. Mykoplasmat kasvavat hitaasti kiinteällä elatusaineella muodostaen hyvin pieniä paistetun kananmunan näköisiä pesäkkeitä (Embree ja Embil 1980). Ne erottuvat tutkijan tarkastellessa kasvustoa esimerkiksi dissektiomikroskoopilla. Genitaalialueella tavataan yhdeksää mykoplasmalajia, joista M. hominis ja Ureaplasmasukuun kuuluva Ureaplasma urealyticum ovat yleisimpiä. Alateitse syntyneet lapset saavat tartunnan genitaalilimakalvoilta, ja vastasyntynyt kolonisoituu. Mykoplasmat ja ureaplasmat voidaan luokitella genitaalialueen normaalimikrobistoon kuuluviksi; ureaplasmoja on eristetty jopa yhdeltä kolmasosalta pienistä tytöistä (Mandell ym. 1995). Aikuisten kolonisaatiosta ei ole tarkkaa tietoa. Sukupuolielinten limakalvojen mikrobistoon kuuluvien mykoplasmojen taudinaiheut - ta mis kyky on heikko, mutta ne voivat joskus aiheuttaa oireilevan taudin. M. hominis eristettiin ensimmäisen kerran vuonna 1937 Bartholinin rauhasen märkäpesäkkeestä. Genitaalimykoplasmat on yhdistetty bakteerivaginoosiin ja niitä on viljelty sisäsynnytintulehduksen yhteydessä otetuista näytteistä. 2661 Duodecim 2011;127:2661 5

TAPAUSSELOSTUS 2662 Mikrobin merkitys näissä tilanteissa jää epävarmaksi. Mykoplasmat on myös yhdistetty raskauden ja synnytyksen aikaisiin infektiohin, kuten septiseen keskenmenoon tai korioamniittiin, sekä neonataalikauden infektiohin (esim. vastasyntyneen keuhkokuume, aivokalvotulehdus, vastasyntyneen pään alueen märkäkertymä) (Taylor-Robinson ja Lamont 2011). Mycoplasma genitalium ja Mycoplasma fermentans bakteereiden rooli perinatologiassa ja obstetriikassa on vähemmän tunnettu. Nykykäsityksen mukaan M. genitalium voi kuitenkin olla opportunistinen taudinaiheuttaja. Mikäli se löydetään normaalisti steriililtä alueelta, tulee se hoitaa (Taylor-Robinson ja Lamont 2011). Kohdunsisäisenä tulehduksen aiheuttajana ureaplasmat on liitetty keskenmenoon (Aaltonen ja Alanen 2008). Miehillä U. urealyticum on ollut läsnä yli 50 %:ssa prostatiitti-infektioista (Skerk ym. 2004) ja 28 %:ssa muista kuin gonokokkiperäisistä virtsaputkitulehduksista yhdessä Chlamydia trachomatiksen kanssa (Paavonen ym. 1978). M. hominiksen ja U. urealyticumin aiheuttamista virtsateiden ja sukupuolielinten ulkopuolisista infektioista on julkaistu vain yksittäisiä tapausselostuksia (esim. Tarrant ym. 2009). Suomalainen ryhmä on julkaissut kahdeksan tapausta, joissa M. hominis on aiheuttanut septisen mediastiniitin. Potilaille yhteistä oli edeltävä sternotomia tai muu heikentävä kardiorespiratorinen riskitekijä. Kirjoittajien mukaan infektion kulku voi olla myös hyvin hidas ja infektio voi ilmentyä kroonisena perikardiittina tai pleuriittina ilman septisen mediasti niitin oireita (Mattila ym. 1999). M. hominis voi aiheuttaa akuutin pyelonefriitin, erityisesti mikäli virtsateissä on virtauseste tai potilaalle on tehty kajoava toimenpide. Varsinkin immuunivastetta heikentävää lääkitystä käyttäville sekä elinsiirto- ja immunoglobuliinipuutospotilaille M. hominis voi aiheuttaa märkäisen artriitin, haavainfektiota ja jopa bakteremian tai sepsiksen. Esittelemme kaksi potilastapausta, joissa kliinisen infektion aiheuttajana on ollut M. hominis. Tapaukset osoittavat, että M. hominis voi yllättää löydöksenä urogenitaalialueelta tai sen ulkopuolelta. Potilastapaus 1 79-vuotias eläkeläinen sairasti pahenemisvaiheessa olevaa nivelreumaa (kortikosteroidihoito), sekundaarista osteoporoosia, verenpaine- ja sepelvaltimotautia sekä astmaa. Kaihi oli leikattu aivan hiljattain, ja mies käytti varfariinia vuotta aiemmin sairastetun aivo infarktin vuoksi. Hän jäi talven päivinä terveyskeskuksen vuodeosaston hoivaan lämpöilevänä (38,3 C) lattialle lyyhistyttyään. Lääkäri epäili aivoverenkierron häiriötä tai infektiota. Miehellä ei ollut kipuja, tiheävirtsaisuutta esiintyi. Virtsatieinfektion hoitamiseksi miehelle annettiin kefaleksiinia suun kautta 750 mg kolmesti vuorokaudessa. Virtsan bakteeriviljelyssä ei todettu bakteerikasvua tai leukosyyttimäärän suurentumista. Verenpaine oli alkuun matalahko, 81/61 mmhg, hengitystielöydöksiä ei ollut. EKG- ja verenkiertoelimistön löydökset olivat normaaleja. Kaatuilua selittivät lämpöilyyn liittyvä heikkous ja matala verenpaine. Vasemmasta kyynärpäästä löytyi palkeenkielimäinen haava, jonka ympäristössä todettiin kosketusarkuutta, mustelma ja reilu turvotus. Märkäeritystä ei ollut, eikä turvotusta pidetty tyypillisenä selluliittina. Haavaan kehittyi pehmytkudosonkalo, josta erittyi puristettaessa verensekaista nestettä. Kyynärpään natiiviröntgen kuvassa todettiin sijoiltaan liikahtanut kyynärlisäkkeen murtuma, jota lausunnossa epäiltiin vähintään viikon vanhaksi. Murtuman vuoksi raaja kipsattiin kolmeksi viikoksi. CRP-pitoisuus vaihteli välillä 43 92 mg/l, valkosolumäärä oli 10,3 4,1 x 10 9 /l. Muu verenkuva oli normaali. Kolmantena hoitopäivänä vanhus poti vähäistä yskää, joten pohdittiin keuhkokuumeen mahdollisuutta. Pientä keuhkokuvan varjostumaa pidettiin sattumalöydöksenä. Kefaleksiiniin ei saatu vastetta, joten tilalle vaihdettiin viidentenä hoitopäivänä amoksisilliini, jota potilas sai suun kautta 750 mg kolmesti vuorokaudessa seitsemän vuorokauden ajan. Vielä kymmenen vuorokautta myöhemmin kipeä haava vuoti runsaasti verensekaista sameata kudosnestettä kipsin alla oleviin siteisiin. Eritteestä otettiin bakteeriviljely (CRP-pitoisuus oli 49 mg/l) ja kipsi vaihdettiin avokipsilastaan. Verenpainelääkitys vähennettiin murto-osaan alkuperäisestä ja vanhus kotiutettiin 21. hoitopäivänä. Haava umpeutui lopulta ilman lisälääkityksiä. Kyynärpään haavaeritteestä otettiin bakteeriviljelynäyte ja kolmen päivän kuluttua saatiin negatiivinen vastaus. Viljelyä jatkettiin ja seitsemän vuorokauden kasvatuksen jälkeen elatusaineella todettiin hädin tuskin havaittava kasvu. Kasvuston gram värjäyksessä ei voitu havaita mitään säännöllisiä rakenteita, mikä viittasi mykoplasmaan. M. hominis varmistettiin erikoisviljelyllä (UrurVi) ja nukleiini happo sekvensoinnilla. Herkkyyttä mikrobilääkitykseen ei määritetty. Vastaanotolla kymmenen vuorokauden kuluttua kotiutuksesta kyynärpään kipu oli poissa ja haavan eritys lakannut. Iho haavan S. Vuorinen ja T. Tuuminen

ympäristössä oli siisti mutta hilseilevä. Paikallishoidossa käytettiin tavanomaisia haavanhoitotuotteita, ei antiseptejä tai mikrobilääkkeitä. Luun infektioon viittaavaa ei todettu (CRP-pitoisuus oli nyt 11 mg/l), joten potilas lähetettiin fysioterapeutin ohjaamaan kuntoutukseen. Potilastapaus 2 Toinen potilaistamme oli keski-ikäinen nainen, jolta oli kolme vuotta aiemmin leikattu vatsaontelon hyvänlaatuinen mutta viisi kiloa painava munasarjalähtöinen musinoottinen kasvain. Leikkauksessa oli poistettu vasen munasarja ja munanjohdin. Kasvain oli aiheuttanut vasemmalle puolelle vesimunuaisen ja vaurioittanut munuaiskudosta pysyvästi. Potilas hakeutui hoitoon kuumeilun ja lihassärkyjen vuoksi. Keskussairaalan päivystyksessä epäiltiin virtsatieperäistä infektiota vasemman munuaisen seudun lievän koputusarkuuden, virtsan makroskooppisen sakkaisuuden ja leukosyyttimäärän suurentumisen vuoksi. Taudinkuva ei ollut septinen huolimatta sahaavasta kuumeilusta. CRP-pitoisuus suurentui enimmillään arvoon 240 mg/l. Merkittävää perifeerisen veren leukosytoosia ei todettu. Plasman kreatiniinipitoisuus oli viitealueella, lasko oli suurentunut arvoon 106 mm/h. Hoitovastetta kefuroksiimin ja siprofloksasiinin yhdistelmään tai myöhemmin imipeneemin ja silastatiinin yhdistelmään ei saatu, mutta potilaan yleisvointi säilyi kuitenkin kohtalaisena. Infektion paikallistamiseksi potilaalle tehtiin vartalon alueen tietokonetomografia, jossa todettiin vasemmalla vaikeasti vaurioitunut munuainen ja sen ympärillä märäksi sopiva kertymä (Kuva). Potilaallemme tehtiin kuudentena hoitopäivänä nefrektomia, josta hän toipui normaalisti. Leikkausdiagnoosiksi muodostui vasemmanpuoleinen pyonefroosi eli märkämunuainen. Leikkausalueelta otetussa näytteessä todettiin grampositiivinen kokkoidi bakteeri, joka kasvoi elatusaineilla tavattoman hitaasti, vasta kuuden vuorokauden inkubaation jälkeen. Tavanomaisessa kasvustosta tehdyssä gramvärjäyksessä ei todettu mitään säännöllisiä mikrobirakenteita, mikä viittasi mykoplasmaan. Löydös tunnistettiin nukleiinihapposekvensoinnilla M. hominis kannaksi. Mikrobilääkeherkkyyksiä ei tutkittu. Leikkausta seuraava menestyksellinen mikrobilääkitys perustui doksisykliiniin, jota potilas käytti kuukauden ajan (solunsisäinen patogeeni, uusiutumisriski). Pohdinta * Kuva. Vatsan tietokonetomografiassa todettiin vasemmalla surkastunut munuainen (ylempi nuoli) ja krooninen hydro nefroosi, jossa altaan laajuus oli noin 10 cm. Munuaisaltaan (alempi nuoli) seinämät tehostuivat varjoaineella ja olivat selvästi paksuuntuneet. Munuaisallasta ympäröivässä rasvassa nähtiin ödeemaa, vasen virtsanjohdin oli vanhastaan laajennut pikkulantiosta ylöspäin. Virtsanjohtimen seinämä oli paksuuntuneen oloinen ja ympäröivässä rasvassa havaittiin tulehdukselliseksi sopivaa juosteilua. Löydös sopi siis pyonefroosiin eli märkämunuaiseen. Oikea munuainen on merkitty tähdellä. Edellä kuvatut potilastapaukset herättivät tarpeen selvittää, onko M. hominiksen ja U. urealyticumin aiheuttamat infektiot piilevä ongelma. Näiden kahden opportunistin taudinkuvat vaikuttavat hyvin samankaltaisilta. Olimme myös kuulleet kollegoiltamme suomalaisista tapauksista, joissa mikrobit ovat aiheuttaneet jopa nekroottisiksi edenneitä pehmytkudosinfektioita. Selvitimme M. hominis- ja U. urealyticum märkänäytelöydökset Itä-Suomessa. Tätä varten poimimme tiedot Kuopion, Joensuun, Mikkelin ja Savonlinnan aluelaboratorioista vuosilta 2007 2011. M. hominis oli eristetty 12 naiselta ja kolmelta mieheltä, U. urealyticum vain yhdeltä naiselta. Potilaiden ikäjakauma oli 16 67 vuotta. Kahdelta potilaalta mikrobi oli eristetty useasta eri bakteerinäytteestä. Eristysalueet olivat leikkaushaava (2 potilasta), pakaravaon tai nivustaipeen haavauma (3), dreeni, vatsaontelo (6), muu haava (1), paise (1) sekä kohtu, munuainen tai istukka (3). On mielenkiintoista sinänsä, että genitaalimykoplasmojen osoittaminen oli onnistunut nopeasti kasvavien patogeenien joukosta. Samassa näytteessä kasvoi esimerkiksi Staphylo- 2663 Mycoplasma hominis voi aiheuttaa pehmyskudosinfektion

TAPAUSSELOSTUS YDINASIAT 88Mycoplasma hominis on ihmisen urogenitaalialueella esiintyvä, yleensä harmiton bakteeri. Joskus se voi kuitenkin aiheuttaa jopa henkeä uhkaavia, hitaasti paranevia pehmytkudosinfektiota. 88Sekä kliinikon että laboratorion on tärkeä epäillä mykoplasmaa, kun kliininen kuva viittaa infek8tioon mutta tavallisella viljelymenetelmällä ei voida osoittaa taudinaiheuttajaa. 88Mykoplasmoja voidaan viljellä erikoiskasvualustalla. 88Mykoplasmat ovat beetalaktaameille resistent8tejä. M. hominis- ja U. urealyticum diagnostiikka onnistuu parhaiten, jos lääkäri osaa epäillä mykoplasmainfektiota ja pyytää spesifisen viljelyn tai nukleiinihapon osoituksen. Tällöin M. hominis ja U. urealyticum viljellään muun mikrobiston kasvua estävällä erikoiskasvualustalla. Suomen laboratorioista vain yksi tarjoaa mykoplasmaviljelyä. Tavanomaisella veriviljelylaitteella mykoplasmoja ei kyetä osoittamaan. Kasvu vaatii rikkaan kasvualustan, mutta laitteiden indikaattorimenetelmä ei pienen hiilidioksidituotannon vuoksi pysty osoittamaan mikrobin metaboliatuotteita (Waites ja Canupp 2001). Meidän poiminnassamme ei ollut yhtään myko plasmalöydöstä veriviljelystä. Lopuksi 2664 coccus aureus (pakaravako), Escherichia coli ja Bacteroides fragilis (vatsaontelo), Candida albicans (paise) ja Prevotella-laji (munuainen). Yhdestä kohtunäytteestä oli pystytty eristämään sekä M. hominis että U. urealyticum. Suurinta osaa otoksen potilaista oli hoidettu tuloksetta ensimmäisen ja toisen polven kefalosporiinilla, yksin tai metronidatsolin kera. Materiaalin M. hominis löydökset jäivät harvinaisiksi, mutta poimintamme tehtiin ainoastaan bakteerin märkäviljelyillä (Pu-BaktVi1) tehdyistä tutkimuksista eli tilanteista, jolloin lääkäri ei osannut epäillä mykoplasman aiheuttamaa infektiota. Kirjallisuudessa on hiljan julkaistu tapaus, jossa U. urealyticum aiheutti 19-vuotiaan naisen munuaissiirteeseen munuaisen sisäisen märkäkertymän (Eilers ym. 2007). Patogeeni onnistuttiin viljelemään kaupallisella Mycoplasma Duo reagenssilla. Kirjoittajat korostivat, että patogeenin löytäminen oli tärkeää, sillä se johti oikeaan mikrobilääkevalintaan. Kirjoittajien mielestä yleistyneessä syvässä urea plasma infektiossa tulee käyttää bakterisidisia fluorokinoloneja. Toisaalta tetrasykliinit vaikuttavat kliinisesti käyttökelpoisilta. Toisessa tutkimuksessa todettiin, että viljelymenetelmän ja geenimonistustestin yhteneväisyys oli varsin hyvä (96 %), kun analysoitiin 68 henkitorven imulimanäytettä 60 keskoselta (Cheah ym. 2005). Geenimonistusmenetelmää M. hominiksen osoittamiseen ei ole rutiinikäytössä. Jos potilas on oireinen eikä tavanomaisella viljelytekniikalla steriilin alueen näytteestä todeta kahden vuorokauden kuluessa kasvustoa, maljoja voisi kasvattaa lisäviikon verran. Esitetyt ta pauk set mielestämme osoittavat, että M. hominis voi aiheuttaa kliinisiä ja kenties epätyypillisiä infektioita ja että tätä patogeeniä kannattaa epäillä ja etsiä aktiivisesti. SAKARI VUORINEN, LL, erikoislääkäri, infektioylilääkäri Mikkelin keskussairaala, Etelä-Savon sairaanhoitopiiri TAMARA TUUMINEN, dosentti, ylilääkäri Itä-Suomen laboratoriokeskuksen liikelaitoskuntayhtymä, Mikkelin aluelaboratorio Sidonnaisuudet Kirjoittajilla ei ole sidonnaisuuksia S. Vuorinen ja T. Tuuminen

KIRJALLISUUTTA Aaltonen R, Alanen A. Kohdunsisäinen ureaplasmainfektio. Duodecim 2008;124: 7 8. Cheah FC, Anderson TP, Darlow BA, Murdoch DR. Comparison of the Mycoplasma duo test with PCR for detection of Ureaplasma species in endotracheal aspirates from premature infants. J Clin Microbiol 2005;43:509 10. Eilers E, Moter A, Bollmann R, Haffner D, Querfeld U. Intrarenal abscesses due to Ureaplasma urealyticum in a transplant kidney. J Clin Microbiol 2007;45: 1066 8. Embree JM, Embil JA. Mycoplasmas in diseases of humans. Can Med Assoc J 1980;123:105 11. Itä-Suomen Laboratoriokeskuksen web-ohjekirja https://ekstra1.kuh.fi/csp/ islabohje/labohje.csp?indeksi=2188 Mandell GL, Bennett JE, Dolin R, toim. Mandell, Douglas and Bennett s principles and practice of infectious diseases, 4th edition. Churchill Livingstone Inc. 1995. Mattila PS, Carlson P, Sivonen A, ym. Life-threatening Mycoplasma hominis mediastinitis. Clin Infect Dis 1999;29: 1529 37. Paavonen J, Kousa M, Saikku P, Vesterinen E, Jansson E, Lassus A. Examination of men with nongonococcal urethritis and their sexual partners for Chlamydia trachomatis and Ureaplasma urealyticum. Sex Trans Dis 1978;5:94 6. Skerk V, Krhen I, Schonwald S, ym. The role of unusual pathogens in prostatitis syndrome. Int J Antimicrob Agents 2004; 24 Suppl 1:S53 6. Tarrant W, Gonzalez-Berjon JM, Cernoch PL, Olsen RJ, Musser JM. Spontaneous bacterial pericarditis with tamponade due to Ureaplasma spp. J Clin Microbiol 2009;47:1965 8. Taylor-Robinson D, Lamont RF. Mycoplasmas in pregnancy. BJOG 2011;118: 164 74. Waites KB, Canupp KC. Evaluation of BacT/ALERT system for detection of Mycoplasma hominis in simulated blood cultures. J Clin Microb 2001;39:4328 31. Summary Mycoplasma hominis may cause soft tissue infections Mycoplasmas belong to the smallest micro-organisms that are independent of animal or plant cells. They are classified as bacteria, since their cultivation does not require any cells. Mycoplasma hominis is a commensal of the human urogenital region, but may sometimes cause even life-threatening, slow-healing soft tissue infections. Ureaplasma urealyticum may cause similar infections. It is important both for clinicians and the laboratory to suspect mycoplasma, when clinical picture indicates infection and the infectious agent cannot be shown by ordinary culturing methods.